NanoDrop Eight 是赛默飞(Thermo Fisher Scientific)开发的一款多通道微量分光光度计,能够同时检测多达 8 个样品,适合核酸、蛋白质和寡核苷酸等样品的定量与纯度分析。其核心优势是微量样品检测(仅需 1–2 µL)、高通量、多模式选择以及快速出结果。相比传统比色皿分光光度计,它更加节约样本和耗材,检测效率显著提升。
为了获得可靠的检测数据,正确掌握 NanoDrop Eight 的检测步骤尤为重要。
开机后检查主机和检测平台是否清洁。
确认光学窗口无灰尘、水渍或残留物。
检查电源是否稳定,避免在电压波动环境下运行。
NanoDrop Eight 采用氘灯与钨灯组合光源,开机后需等待数分钟,以保证光源稳定。
预热时间通常为 5–10 分钟,不宜过短。
启动配套软件,根据实验类型选择检测模式(核酸、蛋白质、寡核苷酸或自定义方法)。
若为定量实验,可预先设置标准曲线参数。
每个通道需 1–2 µL 样本。
若体积不足,可能无法形成完整液滴,导致检测失败。
DNA:2–15,000 ng/µL
RNA:2–5,000 ng/µL
寡核苷酸:2–5,000 ng/µL
蛋白质(A280 法):0.1–100 mg/mL
核酸 A260/A280 比值应在 1.8–2.0 之间。
RNA A260/A280 理想值为 2.0 左右。
蛋白质检测缓冲液需避免在 280 nm 附近有强吸收。
确保溶液澄清,无沉淀或颗粒。
检测前充分混匀,避免浓度分层。
对 RNA 样本需使用 RNase-free 器材,避免降解。
用无绒纸或专用擦拭布蘸去离子水,清洁检测平台。
确保光学窗口表面无尘粒和残液。
在检测平台上加 1–2 µL 对照缓冲液,关闭压杆进行检测。
软件会自动记录参比值,作为后续样本计算的基线。
将待测样本移取 1–2 µL 加至检测平台。
确保样本液滴覆盖光学窗口,无气泡。
加样顺序应保持一致,避免交叉污染。
关闭压杆,软件开始自动检测。
检测过程仅需数秒,结果将实时显示在界面上。
系统会显示浓度值、A260/A280 比值、A260/A230 比值及完整光谱曲线。
用户可选择导出数据或直接生成检测报告。
每次样本检测后,应立即用去离子水清洗光学窗口。
避免残留物干燥附着在检测平台上。
DNA 浓度换算:A260 = 1.0 时,约等于 50 µg/mL。
RNA 浓度换算:A260 = 1.0 时,约等于 40 µg/mL。
纯度判断:
A260/A280 = 1.8–2.0 表示核酸纯度较好。
A260/A230 = 2.0–2.2 表示基本无有机污染。
A280 法:适合纯化蛋白。
染料法:如 Bradford 法,需绘制标准曲线。
纯度判断:若缓冲液有吸收干扰,应结合对照样本进行扣除。
软件支持同时显示 8 个样本的检测结果。
可批量导出为 Excel 或 PDF 文件,便于保存与分析。
高浓度样本应稀释后检测,以保持在仪器线性范围内。
对 RNA 样本,可加入保护剂以提高稳定性。
避免样本带入气泡,否则会影响光路。
检测顺序从低浓度到高浓度,减少交叉污染风险。
对重要实验,建议同时保存浓度值和光谱曲线。
对染料法实验,应使用同一批次试剂,避免批次差异。
检测无结果或数值过低
可能原因:样本浓度过低或体积不足。
解决方法:增加样品浓度,确保加样体积足够。
吸光度过高
可能原因:样本浓度超出检测范围。
解决方法:进行适当稀释。
重复性差
可能原因:样本未混匀或平台未清洁。
解决方法:混匀后再检测,每次检测后及时清洁平台。
A260/A280 比值异常
可能原因:核酸样品中含蛋白质或酚。
解决方法:进一步纯化样品。
建立 SOP:实验室应制定 NanoDrop Eight 标准操作规程。
人员培训:所有使用人员需接受培训,熟悉操作流程。
使用记录:每次检测应记录样品编号、检测时间和浓度值。
维护保养:定期进行光学窗口检查和软件升级,确保长期稳定运行。
分子克隆实验
快速检测质粒 DNA 浓度,保证下游实验成功。
转录组学研究
高通量 RNA 样本检测,提高测序前质控效率。
蛋白质组学研究
多样品并行检测,提高蛋白质定量的效率和准确性。
临床与药物开发
临床样品核酸检测,药物研发中蛋白质浓度监测。
NanoDrop Eight 以其 微量样本检测、多通道高通量、操作简便、结果准确 的特点,为实验室核酸和蛋白质的定量检测提供了高效方案。通过规范的检测步骤,包括 仪器准备、样本制备、空白参比、加样检测、数据处理和平台清洁,用户能够获得可靠的实验结果。同时,结合实验优化和规范化管理,可以最大限度发挥 NanoDrop Eight 的性能优势,提升实验室的工作效率与科研质量。
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