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一、时间控制的基础原理

时间控制是离心实验中关键参数之一。在微量离心过程中，离心时间直接决定样本中颗粒的沉降程度、上清清晰度、残余物的量、样本温度暴露时间、离心结束时样本状态等。对于该机型而言，其时间控制功能与速度（转速或 RCF）以及温度设定密切相关。

• 该机型支持 1 分钟至 99 分钟的预设离心时间，以 1 分钟为步进。 

• 除此之外，还提供 Continuous（持续运行）模式（在界面中显示为 “hd”／HOLD）— 即不预设结束时间，仪器持续运行直到手动停止。 

• 时间设定在离心前即输入，启动后仪器会倒计时；当剩余时间少于 1 分钟时，显示通常切换为秒数显示。 

因此，理解和合理设定离心时间对于确保样本处理效果、保护样本结构、节省实验室时间、提升通量效率都非常关键。

二、操作界面与时间预设流程

1. 控制面板及运行模式概述

在该机型的用户界面上，常见的控制元素包括：启动／停止键、“设定”键（增加、减少）、时间显示区、转速／RCF 显示区、温度显示区（对于冷冻型号）等。机器开机自检完毕后进入“当前值模式”，此时显示转速＝0、剩余时间＝0、温度为当前腔室温度。 用户可通过“设定”键进入预设时间状态。

2. 时间参数预设步骤

典型步骤如下：

1. 在启动设备并装好转子、关闭盖子、保证装载平衡后，进入控制面板。

2. 将焦点切换到“时间”字段（通常标为 “Time” 或 “Min”）。

3. 使用“↑”键（增加）或“↓”键（减少）进入预设时间模式。此时显示区会闪烁，提示用户当前处于预设状态。 

4. 按键短触时，每次变化 1 分钟；若长按按键，显示会先慢速变化，几秒后加快变化，直到松开按键

5. 当设定到所需时间后，屏幕上的闪烁停止，预设值自动存储，此时仪器处于“预设时间值”状态。 

6. 若需要“持续运行”模式（HOLD／hd），在时间设定界面持续按“↓”键（或按键说明中的相应键）直到显示 “hd” 或 “HOLD” 即可。此时仪器启动后将按手动停止方式运行。

7. 按 “Start” 键启动离心机，倒计时开始，时间显示区将显示剩余分钟，当剩余 1 分钟以内，显示切换为秒数显示。

3.运行中修改时间

该机型允许在离心进行时修改剩余时间：

• 在运行中，用户可短按任何 “设定”键进入预设模式，此时当前时间字段闪烁；然后可通过 “↑”／“↓” 调整剩余时间。释放后，新的剩余时间启动继续计时。 

• 需要注意的是，修改时间时样本正在高速旋转，若随意改动可能会干扰分离过程或导致样本扰动。因此，除非常规需要（如延长离心以增强沉降）外，建议尽在停止或即将结束前再调整。

三、不同模式下时间控制细节

1. 固定时间模式（1–99 分钟）

这是最常用模式，设定一个具体时间使离心过程自动结束。适用于常规样本处理，如 DNA 凝聚、蛋白沉淀、微量离心管常规分离。优点在于：操作便捷、可重复性强、便于流程标准化。使用时应注意：

• 选择合适时间：时间过短可能导致沉降不完全，时间过长可能引起样本混浊、沉淀破裂、管壁析液或样本降解。

• 与转速／RCF／温度三者配合：时间设定必须建立在转速与温度已妥当设定的基础上。

• 监督倒计时过程：可通过显示观察剩余时间，当倒计时完成即自动停止，显示“End”或类似状态。 

2. 持续运行模式（HOLD／hd）

持续运行模式允许离心机连续工作，无预设结束时间，直到用户按“Stop”键结束。适用于以下场景：

• 需要不中断连续加载或卸载样本的高通量操作。

• 需要观察离心过程结束点，但不确定具体所需时间。

• 某些特殊应用，如细胞碎片持续沉降、浓缩实验需要用户根据视觉或实验观察终止。
  使用时注意：

• 因无固定时间限制，操作人员必须保持监控状态，防止过长时间运行导致离心管过热、样本降解或转子疲劳。

• 液体长期离心可能导致样本温度升高、蒸气析出、样本袋壁受压等问题。建议设置合理时间范围或周期性检查。

• 使用持续运行模式前，应确认样本类型适合，无明确时间要求且用户可及时手动终止。

四、在不同实验流程中的时间选择建议

1. 核酸提取／PCR前处理

在 DNA 或 RNA 提取流程中，常通过离心步骤分离沉淀或洗涤液。推荐如下：

• 使用 1.5–2.0 mL 微量管、转子兼容。设定转速如 8,000–12,000 rpm（对应约 10,000–15,000 × g）为参考。时间可设定为 5–10 分钟。

• 若样本含 RNA 且敏感，建议时间偏短（例如 4–6 分钟），同时开启冷冻功能并设定离心温度在 4–8 °C，以降低酶活或降解。

• 对洗涤步骤而言，尽管时间可短一些（例如 2–4 分钟），但应确保充分离心。建议过程中监测上清液是否清澈。

2. 蛋白沉淀／超滤前处理

蛋白质或免疫复合物操作对离心力与温控敏感。时间建议如下：

• 如离心沉淀蛋白，设定较高转速（如 12,000–14,000 rpm）对应较高 × g。时间可设定为 10–15 分钟，以确保沉淀清晰。

• 若样本含活性酶或温度敏感蛋白，应开启冷冻功能，并将时间控制在 8–12 分钟范围内，以减少样本暴露时间。

• 若用于样品浓缩（如超滤预处理），可能需要更长时间（15–20 分钟）以确保滤管内液体尽量流出，但仍应注意样本状态与管材耐受性。

3. 血液／临床样本／毛细管离心

• 对于血浆、血清分离或血比容毛细管分离，通常离心力不需最大，但时间应设定适中。推荐时间范围为 3–8 分钟，转速视样本量而定。

• 若样本中含有细胞或碎片，建议时间偏短、防止细胞破裂或过度压缩。可结合冷却功能，将温度设定为约 10 °C 并设定离心 4–6 分钟。

• 对于毛细管离心，其离心头一般规格较小，建议参考转子说明书中对应时间，不宜过长以防裂管。

4. 高通量／混合管型场景

• 若使用双排转子（如 18 × 2 mL + 0.5 mL）或0.5 mL 小体积微量管，需要考虑样本体积小、转子半径小、离心稳定性较差。此时虽然可使用高速，但建议时间适度缩短，如 4–8 分钟，以避免小管壁因高速离心时间过长而受力疲劳。

• 若样本多批次，建议设定标准时间（如 6 分钟）并统一流程，以提高通量并减少错误。

五、时间控制的常见误区与优化建议

常见误区

1. 认为“越快越好”／“时间越长越沉得越彻底”。实际上，时间过长可能导致样本再悬浮、温度升高、管材受力增大、沉淀撬出。

2. 忽视样本类型对时间要求。如温度敏感样本、细胞／颗粒敏感样本需要时间更短、转速更温和。

3. 忽视温控与时间的耦合。即便设定时间足够，如果温度控制不当（如超出样本耐受温度），离心效果或样本完整性仍可能受到损害。

4. 使用持续运行模式却无人监控。若未及时结束，可能造成设备负荷过大或样本状态不佳。

优化建议

• 建议实验前做预实验：设定不同时间组（如 4、6、8、10 分钟）观察沉降效果、上清清晰度、样本质量，选出最佳时间。

• 建立标准流程：结合样本类型、管型、转子型号，为每种流程设定推荐时间，避免每次操作时重复思考。

• 定期检查设备：若离心时间常用为 6 分钟，但发现沉降效果变差，可能是转子磨损、散热不良、样本量变化导致，需要重新优化时间。

• 考虑温度控制：在每次操作设定时间前，确认温度已达预设（尤其带冷却功能时）——如果温度还没稳定，再启动离心，相当于“时间”指向过程中温度不恒定，会影响分离效果。

• 使用日志记录：记录每次离心的时间设定、样本类型、管型、转子型号、结果备注，如上下清晰、残留量、问题情况等，有助于长期优化流程。

六、时间控制与设备效率、样本保护之间的关系

时间控制不仅影响离心效果，还与设备效率、样本保护和实验室通量密切关联。

• 设备效率：合理设定时间可以缩短单次运行周期，提升实验室通量。该机型加速/减速性能优异（约 10–12 秒）使得多批次运行更为高效。 

• 样本保护：对于温度敏感或结构易损样本（如 RNA、蛋白、细胞碎片），过长离心或温控不当都可能损害样本。合理时间设定、有温控辅助的离心流程可延长样本稳定期。

• 设备寿命：连续长时间运行或使用持续模式若未及时停止，会增加转子、轴承、冷却系统负荷，从而缩短设备寿命。适当时间控制可减轻设备负荷。

• 通量处理：在高通量实验室环境下，标准化时间设定、统一参数可避免人为误操作、缩短空闲等待时间、提高整体样本处理速率。

因此，从实验室管理角度来看，时间控制流程化、标准化、记录化，是提升离心仪使用绩效的重要环节。

七、管理与记录建议

为确保时间控制的有效性与安全性，建议实验室建立以下制度：

• 离心流程记录表：对于每次使用该机型，记录：操作者、日期、样本类型、转子型号、管型、预设时间、预设速度／RCF、温度设定、实际运行结果（如上清清晰、沉淀情况、异常情况）。

• 标准操作规范（SOP）：制定该机型时间设定的建议范围，如 DNA 提取流程 → 6 分钟，蛋白沉淀流程 → 10 分钟，血样离心流程 → 4 分钟等。并注明温控、转速、样本量等配合条件。

• 定期评估与优化：每月或每季度回顾记录表，分析是否出现“沉淀未完全”“上清浑浊”“样本降解”等问题，判断是否需要调整时间设定。

• 培训与授权制度：确保所有使用该机型的人员掌握时间设定流程、了解不同样本时间需求、能识别何时应使用持续模式、何时应设定固定时间。

• 设备维护提醒：将时间设定与设备维护挂钩，例如连续运行超过设定批次数后，应安排冷却、检查转子状态、清洁腔室、避免非计划的长时间运行。