质保3年只换不修，厂家长沙实了个验仪器制造有限公司

一、实验前准备

1. 目的

确保离心实验在安全、稳定、可重复的条件下进行，为后续样品分离、浓缩、沉淀或纯化提供高质量基础。

2. 实验环境要求

• 温度范围：室温 15 – 30 °C；

• 湿度：≤ 75%；

• 工作台：平稳坚固、耐振动、防滑；

• 电源条件：AC 220 V ± 10%，50/60 Hz，独立接地；

• 通风空间：机体四周保持至少 10 cm 距离，避免堵塞冷凝风道；

• 光照与噪音环境：避免强光直射和周围大型振动源。

3. 设备检查

• 电源指示灯亮起后显示屏应正常启动；

• 盖锁机构开合灵活，无卡滞；

• 转子座与主轴干净无灰尘与锈斑；

• 冷凝通风口畅通无阻；

• 报警提示处于待机状态，无错误代码。

4. 实验用品准备

• 样品管（0.2 mL、0.5 mL、1.5 mL、2 mL 类型）配合匹配转子；

• 各类转子：微量管转子、PCR 条管转子、适配器；

• 吸头、移液枪及防污染装置；

• 平衡用蒸馏水或等密度溶液。

5. 样品预处理

• 选择合适的缓冲体系；

• 去除杂质颗粒，防止转子不平衡；

• 对需冷冻的样品，提前预冷至 4 °C。

二、设备启动与预冷流程

1. 开机步骤

1. 接通电源，打开主电源开关；

2. 显示屏亮起并完成系统自检；

3. 显示 “READY” 表示设备处于待机状态。

2. 预冷模式

• 若实验需在 4 °C 下运行，建议使用 “PRECOOL” 功能；

• 设置目标温度（如 4 °C）并按下 PRECOOL 键；

• 等待腔体温度稳定，显示屏提示 “PRECOOL DONE”；

• 预冷过程中不应放置样品管，以防冷凝水影响平衡。

3. 检查运行条件

• 确认盖锁开关灵敏；

• 核对转子型号与设定速度匹配；

• 检查实验记录表是否填写完整。

三、样品装载与平衡

1. 平衡原则

所有离心管必须对称放置。若样品数为奇数，应使用平衡管补齐，平衡误差不超过 0.01 g。

2. 装载步骤

1. 根据实验类型选择合适转子；

2. 将样品管轻放入孔位中，避免撞击；

3. 若含挥发性或腐蚀性溶液，需使用密封盖或O形圈防护；

4. 确认各管液面高度一致，无气泡；

5. 盖上转子盖并旋紧螺帽。

3. 防污染措施

• 对生物样品操作时，戴防护手套与护目镜；

• 使用一次性离心管并避免交叉污染；

• 若样品有潜在生物风险，放入生物安全封闭转子中。

四、转子安装与盖锁确认

1. 转子安装

1. 打开机盖并检查主轴洁净；

2. 将转子垂直插入主轴孔中；

3. 顺时针旋紧固定螺帽至止点；

4. 确认转子与主轴结合紧密，不得晃动。

2. 盖锁检查

• 关闭上盖直至听到“咔哒”声；

• 屏幕提示 “LID LOCKED” 后方可启动；

• 若盖未锁紧，系统将显示错误代码 E01 并禁止运行。

五、参数设定

1. 设定顺序

依次输入：
转速 → 离心时间 → 温度 → 加减速等级 → 程序编号（可选）。

2. 具体设置方法

• 按 SET 键进入参数界面；

• 通过 UP/DOWN 键调整数值；

• 按 ENTER 键确认后切换下一项；

• 设置完成后按 MODE 键选择显示 rpm 或 RCF；

• 若需保存为固定方案，按 PROG 键存储。

3. 常用参数参考

六、离心运行

1. 启动

• 确认所有参数无误后，按 START 键；

• 设备自动加速至目标转速；

• 显示屏实时显示 rpm、温度、剩余时间。

2. 运行监控

• 注意观察声音是否均匀；

• 若出现异常震动或报警，应立即按 STOP 键终止运行；

• 不可在运行中尝试打开盖锁。

3. 运行结束

• 设备自动减速，转速降至 0 rpm 后显示 “END”；

• 蜂鸣提示实验完成；

• 待盖锁自动释放后方可开盖。

七、样品取出与后处理

1. 开盖与取样

1. 确保转速显示为 0 rpm；

2. 按下盖锁开关，缓慢开启上盖；

3. 取出转子，轻放在耐热防震垫上；

4. 逐一取出样品管，避免液体晃动；

5. 若样品为生物类，应在生物安全柜中操作。

2. 样品处理建议

• 上清液与沉淀分离时，使用移液器轻取；

• 对温度敏感样品，立即置于 4 °C 环境或冰上保存；

• 离心后管壁残留液可用吸头轻触吸取。

八、运行结束后的设备处理

1. 转子清洁

• 使用中性洗液与柔软布清洁转子表面；

• 清洗后用去离子水冲净并晾干；

• 若转子为铝合金材质，可涂薄层防锈硅脂。

2. 腔体维护

• 擦拭冷凝水，保持腔体干燥；

• 检查是否有样品溢出或残留；

• 用湿布清洁后再用干布擦净。

3. 系统关闭

• 按 STOP 键或关闭电源开关；

• 拔下电源插头；

• 打开上盖通风 10–15 分钟。

九、特殊实验流程举例

1. 核酸提取离心步骤

1. 将样品溶液转入 1.5 mL 离心管；

2. 设定 12,000 rpm、10 min、4 °C；

3. 离心后弃去上清，保留沉淀；

4. 重复洗涤步骤直至纯化完成。

2. 蛋白质沉淀实验

1. 样品加等体积沉淀剂（如丙酮或三氯乙酸）；

2. 静置 30 分钟后设定 10,000 rpm、10 min、4 °C；

3. 离心后弃上清，用缓冲液洗涤沉淀；

4. 低温保存或溶解用于后续分析。

3. 细胞收集

1. 悬浮细胞培养液装入离心管；

2. 设定 2,000 rpm、5 min、4 °C；

3. 离心后小心弃上清；

4. 用 PBS 洗涤两次备用。

十、安全与质量控制

1. 安全操作规范

• 使用前确保转子及样品平衡；

• 不得超过转子允许最高转速；

• 不得处理放射性或高腐蚀性物质；

• 若出现报警（如 E02 不平衡、E03 过热）立即停机。

2. 样品追踪管理

• 每次实验记录样品编号、运行参数与操作者姓名；

• 建立电子文档保存运行数据；

• 记录异常情况及处理措施。

3. 实验重复性控制

• 同类型样品应使用相同参数条件；

• 定期校验转速与温控精度；

• 使用同批次耗材减少偏差。

十一、常见问题处理

十二、实验室运行管理建议

1. 设立标准操作规程（SOP）：统一所有操作人员的离心流程。

2. 使用前清单检查：确保每次运行前完成设备自检与平衡确认。

3. 建立样品追踪体系：实验日期、参数、样品编号一一对应。

4. 定期维护记录：每周清洁，每季度校准，每年由专业人员检修。

5. 温度与转速校准文件化：确保所有实验结果可追溯。

十三、实验优化与经验总结

1. 样品密度匹配
   平衡管液体密度应与样品相同，以防离心力偏差。

2. 加速/减速曲线选择
   对易分层样品使用缓慢减速模式，避免扰动沉淀。

3. 温控策略
   对酶类、RNA 等热敏样品，建议全程 4 °C 运行并提前预冷。

4. 转子选择优化

• 微量管样品：使用 24 × 2 mL 标准转子；

• PCR 反应管：选 36 × 0.2 mL 转子；

• 需封闭操作样品：使用带密封盖转子。

5. 实验结束后设备复位
   运行完毕后应恢复默认参数（3,000 rpm、5 min、20 °C），防止下次误操作。

十四、实验质量与数据记录

• 每次实验应填写离心记录表，包括：

• 样品编号与类型；

• 转速、温度、时间、转子型号；

• 操作者与日期；

• 异常情况及备注。

• 建议使用电子版记录表格存档，并定期备份。