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伯乐(Bio-Rad)Gene Pulser Xcell 电穿孔仪是目前分子生物学实验中常用的高性能基因导入设备之一。它通过瞬间高压脉冲使细胞膜形成可逆性微孔,实现DNA、RNA或蛋白质进入细胞的过程。这一方法操作简便、转化效率高,但同时对实验条件的依赖极强。
在实际操作中,若对设备原理、参数设置或样品准备缺乏理解,容易出现各种错误,从而导致电弧放电、细胞死亡、转化率低、仪器报警或甚至硬件损坏。本文将系统分析 Gene Pulser Xcell 电穿孔仪常见错误类型、成因及解决措施,以帮助科研人员在实验中避免问题、提高效率并延长设备寿命。
在长期使用与实验反馈中,Gene Pulser Xcell 常见错误主要可分为以下六类:
电气系统类错误:包括电弧放电、电压偏差、时间常数异常等;
样品准备类错误:如溶液含盐、气泡形成、细胞状态不佳;
操作步骤类错误:参数设置错误、接线不当、液量过多或过少;
环境与维护类错误:包括仪器接地不良、湿度过高、杯体污染;
系统警报类错误:仪器自动检测异常或内部传感器报错;
实验结果偏差类错误:表现为转化率低、细胞死亡率高或实验重复性差。
下面将逐一进行分析。
现象: 电击过程中出现“啪”的声响、闪光,实验失败。
原因分析:
样品溶液含盐浓度过高;
液面不均或存在气泡;
电穿孔杯未完全干燥;
电压设定过高,超过细胞承受范围。
解决方法:
彻底脱盐,使用10%甘油或无离子水洗涤细胞;
轻轻混匀样品,避免产生气泡;
使用前杯体应完全干燥;
逐步调整电压,从低值开始优化。
现象: 实际输出电压与设定值差异较大。
原因:
电源电压不稳或接地不良;
电缆接口松动;
内部电容老化或控制模块偏移。
解决办法:
使用稳压电源并确保地线接触良好;
检查接口连接;
若问题持续,联系厂家进行校正服务。
现象: 屏幕显示时间常数(τ)与理论值不符。
原因:
电阻或电容参数漂移;
样品电导率过高;
系统自动检测模块误差。
解决措施:
检查样品导电性;
重新设定R与C值;
若仍异常,执行内部校准或联系维修技术支持。
现象: 电弧频繁、细胞全部死亡。
原因: 使用含Tris、NaCl或PBS缓冲液配制样品。
解决方案:
电击样品必须使用无盐体系(如10%甘油或无离子水);
若DNA溶液含盐,使用乙醇沉淀法或超滤脱盐;
检查电导率,应低于5 mS/cm。
现象: 放电时产生不规则火花或电流波动。
原因: 上样混合时剧烈吹打产生气泡,导致电场集中。
解决方法:
轻柔混匀DNA与细胞,避免打泡;
装液时使用低速移液枪;
液面保持平整,不超过杯体标线。
现象: 转化率低或细胞完全死亡。
原因:
细胞处于衰老或静止期;
洗涤次数不足,残留培养基成分;
温度过高导致电击热损伤。
解决措施:
使用对数期活性细胞(OD600≈0.5);
进行3–4次低离子洗涤;
操作全程保持4℃低温。
现象: 仪器运行后无响应或放电失败。
原因:
设置电压、电容、电阻不匹配;
选择了错误的脉冲模式;
时间常数超过安全阈值。
优化建议:
检查设定范围是否适合细胞类型;
对细菌推荐2.5 kV、25 μF、200 Ω组合;
动物细胞建议使用方波模式并控制电压<800 V。
现象: 电极无法完全接触液体或液体溢出。
原因: 上样体积未匹配电穿孔杯间隙。
解决方法:
0.1 cm杯:20–40 μL;
0.2 cm杯:40–60 μL;
0.4 cm杯:80–120 μL。
体积过小会引起电流不稳定,体积过大易造成短路。
现象: 波形不稳定,放电阻抗异常。
原因: 杯体或电极上残留盐分、DNA或细胞碎片。
解决方法:
使用无离子水和70%乙醇清洗;
每次使用后立即擦拭干净;
定期检查电极是否氧化。
现象: 仪器偶发重启或放电中断。
原因: 实验室电源接地线虚接或电阻过大。
解决措施:
检测接地电阻应小于4Ω;
使用独立接地线;
禁止与其他高压设备共用电源插座。
现象: 仪器外壳结露、电流波动或自检失败。
原因: 实验室通风不良、湿度超过70%。
预防方法:
保持环境干燥,湿度控制在30%–60%;
使用干燥剂或除湿机;
不使用时盖上防尘罩。
现象: 长期使用后波形不稳定、放电能量下降。
原因:
长期未清洗电极;
内部电容器老化;
未定期校正。
处理方法:
每月维护一次,半年进行性能检测;
若输出波形明显畸变,应更换电容模块;
定期由厂家技术人员校正。
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