伯乐(Bio-Rad)Genepulser Xcell电穿孔仪是一款专为细胞电穿孔转化设计的高性能仪器。该系统利用瞬时高压电场改变细胞膜通透性,使外源DNA、RNA或蛋白质等分子进入细胞,从而实现基因转染或转化操作。电穿孔是一种高效、非病毒介导的基因导入方法,适用于细菌、酵母、植物原生质体及哺乳动物细胞等多种类型的细胞体系。
Genepulser Xcell系统通过精确控制电压、脉冲时间、电容、电阻等参数,确保实验重复性与稳定性,广泛应用于分子克隆、基因编辑、蛋白表达及免疫学研究等领域。
Genepulser Xcell电穿孔仪主要由主机控制模块、Capacitance Extender电容扩展模块、电极腔体、电极杯、显示控制面板及安全保护系统构成。各模块功能如下:
主机模块:核心控制单元,负责电压输出、脉冲控制、信号检测及实时参数显示。
电容扩展单元:用于调节电容值范围,适配不同类型细胞的转化条件。
电极腔体:与样品直接接触的部件,根据实验类型可选择0.1 cm、0.2 cm或0.4 cm间距的电极杯。
显示控制面板:用于参数设定、状态监控及数据读取,操作界面清晰,支持自定义参数保存。
安全系统:包含过压保护、放电延迟保护及自动复位功能,防止误操作造成设备或样品损伤。
该系统支持手动模式与预设程序模式,可根据实验需求快速切换,以便在多种实验条件下实现最优转化效率。
电穿孔的核心原理是通过瞬间高压脉冲使细胞膜产生短暂的可逆性孔道,从而使外源物质进入细胞内部。主要影响因素包括电压强度、脉冲持续时间、电容、电阻、样品浓度和介质电导率等。
电压(Voltage):决定电场强度,是影响穿孔效果的关键参数。高电压可提高转染效率,但过高可能导致细胞死亡。
电容(Capacitance):控制放电时间常数(τ = RC)。较大的电容可延长脉冲持续时间,适合真核细胞;较小的电容适合原核细胞。
电阻(Resistance):影响电流流速与能量分布,适当的电阻能防止过载放电。
脉冲时间:决定细胞膜开孔持续时间。时间过短会影响导入效率,过长则会增加细胞膜不可逆损伤的风险。
缓冲液电导率:高电导率溶液易造成放电不稳定,应使用专用电穿孔缓冲液。
Genepulser Xcell允许精确设定上述参数,并能实时显示放电曲线,方便操作者优化实验条件。
样品准备
使用对数生长期细胞,确保细胞活性高。
洗涤细胞三次以去除培养基中离子,悬浮于电穿孔专用缓冲液中。
调整细胞浓度,一般为10⁸个细胞/mL。
加入适量质粒DNA或RNA混合均匀。
电极杯准备
选择适合细胞类型的电极间距(如细菌用0.2 cm杯,哺乳动物细胞用0.4 cm杯)。
用无菌水冲洗电极杯,避免残留盐分。
加入适量样品(一般为0.4–0.8 mL)。
参数设定
打开主机电源,确认系统自检通过。
设定电压、电容、脉冲次数及间隔时间。
可根据实验经验或厂家推荐参数设定初始条件。
按下“Set”键确认所有参数后,准备执行穿孔。
电穿孔执行
插入电极杯并确保接触良好。
按下“Pulse”键,仪器自动输出脉冲。
完成后,等待指示灯熄灭方可取出样品,避免残余电荷。
样品后处理
立即将细胞转移至适合恢复的培养基中。
静置于37℃(或相应条件)孵育10–15分钟以恢复膜完整性。
随后进行常规培养或筛选操作。
不同细胞类型对电穿孔条件的耐受性不同,优化过程需要结合实验数据逐步调整。以下是常见优化方向:
电压调整:若转化率低,可逐步提高电压;若细胞死亡率高,应适当降低。
电容选择:哺乳动物细胞通常需要较高电容(500–950 µF),细菌与酵母细胞适合较低电容(25–200 µF)。
脉冲次数:单次脉冲适用于多数情况,但对部分细胞可尝试双脉冲以提高导入效率。
缓冲液优化:使用低离子浓度的缓冲体系可减少电弧放电风险。
样品体积与浓度:保持电极间样品液体覆盖完整但不过量,避免气泡产生。
通过系统性优化,可显著提升基因导入效率并降低细胞损伤率。
使用电穿孔仪前,应确保设备接地良好,防止漏电。
实验过程中严禁打开电极腔体盖板。
放电完成后,应等待设备自动放电完毕后再取样。
不同样品应使用独立电极杯,防止交叉污染。
长时间不使用设备时,应切断电源并覆盖防尘罩。
电极清洁:每次实验结束后立即用蒸馏水冲洗电极杯并晾干。若有沉积物,可使用70%乙醇轻拭清洁。
系统校准:建议每6个月进行一次电压与电容校准,以确保参数输出准确。
散热检查:保持通风良好,避免长时间高强度使用导致过热。
显示系统维护:定期清理控制面板,避免粉尘进入按键缝隙。
电源管理:使用稳定电压电源,防止电压波动影响仪器性能。
良好的维护能延长设备寿命并保持实验数据的可重复性。
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