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Technical articles伯乐电泳槽(如 1658001 和 1658003)是一种广泛用于核酸(DNA、RNA)和蛋白质分离的实验设备。以下将详细介绍伯乐电泳槽的使用方法,从设备准备到实验完成的每个步骤都涵盖其中,以帮助实验人员高效、安全地操作该设备。
确保电泳槽的所有组件(凝胶托架、电极组件、缓冲液槽等)完整无损。
检查电极线连接无破损,确保实验安全。
确保实验环境干燥,避免设备短路。
根据实验目标选择适合的缓冲液:
核酸实验:使用 TAE(Tris-Acetate-EDTA)或 TBE(Tris-Borate-EDTA)缓冲液。
蛋白质实验:使用 SDS-Tris-Glycine 缓冲液。
准备琼脂糖溶液:
根据目标片段大小,选择适合的浓度(通常 0.8%-2%)。
例如:分离大片段 DNA(>1000 bp)用 0.8%-1% 的琼脂糖;分离小片段 DNA(<500 bp)用 1.5%-2%。
称取适量琼脂糖粉末,加入缓冲液(如 TAE 或 TBE),搅拌均匀。
加热溶解:
在微波炉中加热琼脂糖混合液,直至溶解(无颗粒)。
冷却至约 50℃。
倒入凝胶托架:
将凝胶溶液倒入凝胶托架中,插入梳子(形成样品槽),静置约 20-30 分钟直至凝胶固化。
选择合适的预制胶或自制胶:
使用伯乐的 Ready Gel(货号:1610150)预制胶,节省时间。
若自制,按照目标分离分子量配置分离胶和浓缩胶,浇注至 Mini-PROTEAN 电泳槽内。
安装凝胶:
将固化后的聚丙烯酰胺凝胶固定在伯乐电泳槽的凝胶夹上。
核酸样品:
使用 DNA 上样缓冲液(如 6X Loading Dye)与样品混合。
缓冲液通常含有甘油或溴酚蓝,可提高样品密度并便于追踪迁移进程。
蛋白质样品:
使用 SDS 上样缓冲液,将蛋白样品变性处理(通常需 95℃ 水浴加热 5 分钟)。
加入染料(如溴酚蓝)以便于电泳过程中观察。
用加样枪将样品缓慢注入凝胶样品槽,避免气泡进入。
在最后一个样品槽中加入分子量标准 Marker(DNA Ladder 或蛋白质 Marker),以对比目标片段大小。
将凝胶托架安装到电泳槽中,确保凝胶正确放置。
加入缓冲液至液面,确保缓冲液覆盖凝胶并接触电极。
将电泳槽连接到伯乐 PowerPac 电源(如 1645050)。
确保电极线红色接正极,黑色接负极。
核酸实验:
设置电压为 50-150 V,运行时间 30-90 分钟。
根据 DNA 片段大小调整运行时间,染料需运行至凝胶 2/3 处。
蛋白质实验:
设置电压为 100-200 V,运行时间 30-60 分钟。
实验过程中,观察溴酚蓝或其他染料的迁移情况。
定期检查缓冲液液位,确保电泳过程中不会干涸。
关闭电源,断开电极线。
小心取出凝胶托架。
将琼脂糖凝胶浸入染色液中(如 Ethidium Bromide(EB) 或 SYBR Green)。
EB 染色:浸泡 15-30 分钟后脱色。
SYBR Green:快速染色,灵敏度更高。
使用脱色液(如去离子水)清洗凝胶,去除背景染色。
将聚丙烯酰胺凝胶浸入染色液(如 考马斯亮蓝 或 银染液)。
根据染色液说明,完成染色和脱色步骤。
使用伯乐的成像系统(如 Gel Doc EZ System,货号:1708195)观察凝胶条带。
分析条带的分子量和样品浓度,记录实验结果。
倒掉缓冲液,用去离子水清洗缓冲液槽。
拆卸电极组件,用湿布擦拭干净。
检查电极线和电泳槽是否有损坏或老化。
如发现异常,及时更换或联系供应商维修。
将设备存放在干燥、无尘的环境中,避免电极组件长期接触水分。
原因:电场不均或缓冲液液位不足。
解决:检查缓冲液覆盖是否完,确保电泳槽水平放置。
原因:运行时间过长或缓冲液温度过高。
解决:缩短运行时间或更换冷却缓冲液。
原因:电极线连接错误或电压设置不当。
解决:检查电极连接,确保正负极接线无误。
伯乐电泳槽操作简单、高效,但需要严格遵守实验规范,确保实验结果准确无误。以上使用方法适用于伯乐的各种电泳槽设备(如 1658001 和 1658003),如果在使用过程中遇到特殊问题,建议参考产品手册或联系技术支持团队。通过规范操作,您将轻松实现核酸或蛋白质的精准分离与分析!